一、NaClO法漂白江蓠时不同工艺对氯气浓度及漂白效果的影响（论文文献综述）
蔡鹰,李思东,吴湛霞,黄娜,张国光,胡章[1]（2021）在《海藻江蓠琼胶的绿色提取工艺》文中认为【目的】研究从海藻红江蓠（Gracilaria rubra）中提取琼胶的环保加工方法。【方法】在碱处理后的红江蓠中加入红江蓠干质量5倍水,通过机械粉碎形成悬浮液,加热提胶;使用珍珠岩与硅藻土复合预涂助滤剂助滤进行压榨过滤,去除悬浮液里的各种不溶物;过滤后的琼胶液添加质量分数0.30%的粉状活性炭,在（65±5）℃恒温搅拌20 min进行脱色处理,压榨过滤除去粉状活性炭;琼胶液冷冻脱水或压榨脱水,干燥后所得琼胶产品。【结果】所得琼胶产品外观微黄或白色,符合产品色度要求。新工艺全程不需使用盐酸、草酸、化学漂白剂等化学试剂,用水量及废水产生量分别只是传统方法的45%、31%左右,所用江蓠琼胶得率为17.1%,琼胶得率比传统方法提取的高1.2%左右。【结论】使用绿色环保工艺从海藻红江蓠中提取琼胶,可减少化学品对生产场所造成的污染和对工人的伤害,具有在工业生产中推广应用价值。
陈志琳[2]（2018）在《CBM结构域在GH16家族琼胶酶中的功能研究》文中研究指明本研究以产琼胶酶的微球菌为实验菌株,通过克隆获得其全基因组序列,在Blast上比对序列、分析结构,氨基酸序列构建发育树,得知该酶属于GH16家族的β-琼胶酶。通过克隆表达含不同CBM结构域的重组酶,同时研究这些重组酶的酶学性质,以考察CBM结构域在GH16家族琼胶酶中的功能。主要研究结果如下:1、由Blast序列对比分析,得知该菌株的基因序列上有一个活性部位,两个CBM结构域,根据含有的CBM个数不同,对其进行不同长度的截断,重组酶Aga-ms-R是只含有一个CD,含有两个CBM结构域;重组酶Aga-ms-R1是含有一个CD,不含CBM结构域;Aga-ms-R2是含有一个CD,含一个CBM结构域。2、通过克隆表达,并对重组蛋白酶进行分离纯化及其酶学性质的研究。重组酶Aga-ms-R和Aga-ms-R2最适反应温度和pH分别为50℃和7.0,在pH 5.0～9.0范围内稳定性较好,70℃保温30 min,仍有部分酶活;重组酶Aga-ms-R1最适反应温度和pH分别为50℃和7.0,在pH 5.0～9.0范围内稳定性较好,70℃保温30 min,酶活降为0。三个重组酶经过分离纯化得到电泳纯,分别分子量约为:63.62 KDa,31.18 KDa,47.59 KDa,重组酶Aga-ms-R的比活力为:42.89 U/mg,动力学常数Km值、Vmax值分别为7.463 mg/mL,Vmax=2.804μmol/mL·min;重组酶Aga-ms-R1的比活力为:30.67 U/mg,动力学常数Km值、Vmax值分别为Km=8.943 mg/mL,Vmax=0.358 μmol/mL·min;重组酶Aga-ms-R2的比活力为:48.57 U/mg,动力学常数Km值、Vmax值分别为Km=1.571 mg/mL,Vmax=0.864 μmol/mL min;通过对其酶学性质的研究可知含有CBM结构域的两个重组酶比不含CBM的重组酶热稳定性好和酶活更高,表明CBM在维持热稳定性和高酶活力方面起着重要作用,使得Aga-ms-R,Aga-ms-R2有着更好的工业运用前景。3、通过薄层层析,高效液相分析,质谱分析的方法对三个重组酶的酶解产物进行精确分析,产物只有DP4。三个重组酶底物的特异性很强,只有在琼胶为底物下才能反应显色,褐藻胶,卡拉胶为底物的反应均没有显色。表明CBM的缺失并没有引起酶解产物的不同以及CBM对底物有着较强的专一性。本研究通过对GH16家族琼胶酶不同的结构域组合体进行相关酶学性质研究,分析酶解产物以及对比三个组合体的酶学性质和产物的差异性,对CBM结构域的功能进行分析,为CBM的应用提供理论指导。
王连杰,沈照鹏,穆惠敏,崔欣,江晓路[3]（2017）在《微波法提取龙须菜琼胶及其理化性质的研究》文中认为为探究微波提取法在龙须菜琼胶提取中的提取条件以及对琼胶理化性质的影响,实验以山东威海地区养殖的龙须菜为研究对象,在实验室条件下利用微波提取法进行龙须菜琼胶的提取,重点研究了不同微波功率（160、480和800 W）和微波时间（2、4、6、8和10 min）对龙须菜出胶率、琼胶凝胶强度、硫酸基含量、3,6-内醚-L-半乳糖含量、凝固温度和熔化温度等理化性质的影响。结果显示,微波法提取琼胶的最佳条件为料液比1∶60（W/V）,微波功率480 W、微波时间6 min,在此条件下出胶率为16.20%,凝胶强度为1003.6 g/cm2。微波功率和微波时间对琼胶理化性质影响显着,随着功率的提高和时间的增加,龙须菜出胶率和凝胶强度均呈倒U型曲线关系变化,且在最佳提取条件下有最大值;3,6-内醚-L-半乳糖含量先增加后减少,而硫酸基含量则一直减少,且在一定范围内硫酸基含量和3,6-内醚-L-半乳糖含量呈负相关关系;凝固温度和熔化温度均呈现先上升后下降的趋势,在微波功率480 W的条件下提取6 min,二者出现最大值,分别为30.0和97.4°C。研究表明,微波功率及时间是龙须菜琼胶微波法提取的重要因素,且对琼胶理化性质具有显着的影响。
谢金盛[4]（2016）在《琼胶寡糖的酶解制备及其活性研究》文中提出琼胶寡糖是由琼胶通过各种化学或生物学方法降解而得到的低分子量糖类,具有多种生物活性。龙须菜是我国广泛种植的一类红藻,是琼胶的主要来源。为了实现龙须菜和琼胶的高值化利用,本文对重组琼胶酶进行了分离纯化和酶学性质研究;优化了从龙须菜中水提琼胶、酸解和酶解琼胶制备琼胶寡糖的工艺;对琼胶寡糖进行了分离纯化、鉴定及活性研究。具体研究结果如下:1、经过中空纤维柱浓缩、分离,得到电泳纯的重组琼胶酶,分子量约为35 kDa,比活力为1120.37 U/mg。重组琼胶酶的最适反应pH为6.5,最适反应温度为45℃,具有较好的pH稳定性和热稳定性。2、在单因素实验基础上,通过正交试验研究了液料比、水提温度、水提时间对琼胶得率的影响,确定最佳水提琼胶的工艺条件为:液料比28:1（v/w）,水提温度120℃,水提时间90 min,在此条件下琼胶得率为32.8%。3、在单因素实验基础上,采用响应曲面法研究了酸浓度、酸解时间、底物浓度对琼胶水解度的影响,确定最佳酸解工艺条件为:盐酸浓度0.29 mol/L,酸解时间2.69 h,底物浓度4.76%（w/v）,对应水解度为96.95%;研究了 pH、酶解温度、底物浓度对琼胶水解度的影响,确定最佳酶解工艺条件为:酶解时间2 h,加酶量20 U/mL,pH6.36,酶解温度54.47℃,底物浓度0.6%（w/v）,对应水解度为89.75%。经薄层层析、液相色谱、质谱、核磁共振波谱分析,酸解产物包括奇数琼寡糖（DP3、5、7、9）和偶数琼寡糖（DP2、4、6）;酶解产物为偶数新琼寡糖（DP2、4、6、8、10）,主要产物为新琼四糖,该琼胶酶为β-琼胶酶。不同酶解时间主要产物不变,确定该β-琼胶酶为内切酶。4、酶解产物经过SephadexLH-20分离,得到高纯度的新琼寡糖（DP2、4、6）。5、新琼寡糖（DP4、6）的羟自由基清除活性与Vc相当;具有ABTS自由基清除活性,但没有显着的DPPH自由基清除活性和还原力。6、酶解产物混合物、新琼四糖、新琼六糖,及六糖以上新琼寡糖具有抑制酪氨酸酶双酚酶活性,IC50 分别为 15.58 mg/mL,17.28 mg/mL,16.21 mg/mL,18.28 mg/mL;新琼四糖对酪氨酸酶双酚酶的抑制作用属于可逆性竞争型抑制,抑制常数K1为16 mg/mL。7、新琼四糖对ACE活性具有抑制作用,IC50为31.93 mg/mL。8、新琼寡糖具有益生元作用,但效果不如葡萄糖溶液。
王平,张俊杰,谢捷[5]（2013）在《江蓠残渣琼胶提取的方法研究》文中认为目的:分别对新鲜江蓠及其浸提后残渣进行琼胶提取,通过比较,确定琼胶的制备方法。方法:琼胶提取采用高温稀碱法。通过碱处理、漂白常压提胶、冻结、脱水和干燥过程系统地研究琼胶提取的工艺条件。结果:实验数据表明,受到甲醇的影响,湿品的得胶率约为5.5%,比新鲜江蓠的提胶率8.5%要低。另外,色素几乎被全部浸出,因此,只需漂白1次,甚至省略漂白步骤。结论:提胶的最佳碱处理条件是6%NaOH、温度80℃、处理1 h。漂白的条件是先用0.1%的次氯酸钠溶液中处理10 min,然后用0.14%的草酸溶液处理5 min,最后,水洗至中性。
柯德森,刘春媚,周子琳,巫锦雄[6]（2012）在《海水提取龙须菜琼胶的碱处理条件优化》文中研究说明利用完全正交实验法对海水提取龙须菜琼胶工艺中的碱处理时间、温度及碱液浓度进行对比研究,通过对琼胶样品中的硫酸基含量、出胶率和凝胶强度的测定,分析不同碱处理条件对龙须菜琼胶产品质量的影响.实验结果表明,利用海水提取龙须菜琼胶的最佳碱处理条件:碱处理温度90℃,碱液浓度8%,碱处理时间60 min.此条件处理所得的龙须菜琼胶产品的平均凝胶强度比标准的琼胶样品的凝胶强度高69.08 g.cm-2.
李光喜,黄洁玉,唐春萍,林汉森[7]（2011）在《龙须菜片的制备及其润肠通便作用研究》文中研究表明目的:制备龙须菜片,并研究其润肠通便作用。方法:采用正交实验设计制备龙须菜片;采用正常小鼠粪便计数实验、小肠推进实验、复方地芬诺酯致小鼠便秘模型,观察龙须菜片对正常小鼠小肠内容物推进率和正常、便秘模型小鼠首次排便时间、粪便粒数、重量的影响。结果:优化处方为龙须菜干粉0.175g,淀粉0.25g,交联聚乙烯吡咯烷酮0.01g;所制备的龙须菜片各个剂量组均能明显增强小鼠小肠运动,增加小鼠粪便粒数、重量和提高排便频率。结论:龙须菜片处方工艺合理可行,有明显的润肠通便作用。
吴湛霞,董静静,李思东,张琳[8]（2010）在《国内江蓠提取琼胶加工工艺的研究进展》文中提出目前,我国的琼胶生产主要是采用江蓠为原料提取的。对近十几年来国内江蓠提取琼胶的有关工艺技术研究做了比较全面系统的综述。
蔡鹰,李思东,黄家康,陈碧[9]（2009）在《海水替代淡水在江蓠加工中的应用研究》文中进行了进一步梳理用海水替代淡水进行江蓠加工生产,是解决江蓠加工需要消耗大量淡水的有效途径,具有良好的社会效益和经济效益。实验结果表明,通过pH控制,使海水的pH=6.0～6.5,使用0.55%HCl作为酸化液,0.40%H2C2O4作为二次酸化、增白液,海水完全可以用于江蓠的加工生产,替代率高达73%。
黄家康,蔡鹰,李思东,杨磊[10]（2009）在《沙菜卡拉胶漂白工艺研究》文中研究说明我国有着丰富的沙菜（Hypena）资源,它是生产卡拉胶（Carageena）的主要原料之一。文章在沙菜酸化、漂白的工艺环节中增加了H2C2O4再次酸化、增白的步骤,得出了合理的沙菜卡拉胶漂白工艺,所产沙菜卡拉胶外观白色、得胶率和凝胶强度高。
二、NaClO法漂白江蓠时不同工艺对氯气浓度及漂白效果的影响（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、NaClO法漂白江蓠时不同工艺对氯气浓度及漂白效果的影响（论文提纲范文）
（1）海藻江蓠琼胶的绿色提取工艺（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 主要药品试剂 |
| 1.2 主要仪器设备 |
| 1.3 方法 |
| 1.3.1 提取方法 |
| 1.3.2 珍珠岩和硅藻土不同助滤方式对琼胶液过滤效果的影响 |
| 1.3.3珍珠岩预涂助滤剂对过滤周期的影响 |
| 1.3.4珍珠岩与硅藻土复合预涂助滤剂对过滤周期的影响 |
| 1.3.5 珍珠岩与硅藻土复合预涂助滤剂对过滤精度的影响 |
| 1.3.6 活性炭不同添加量对脱色效果的影响 |
| 1.3.7 统计学分析 |
| 2 结果与讨论 |
| 2.1 珍珠岩和硅藻土不同助滤方式对琼胶液过滤效果的影响 |
| 2.2 珍珠岩和硅藻土拌浆过滤对过滤周期的影响 |
| 2.3 珍珠岩预涂助滤剂对过滤周期的影响 |
| 2.4 珍珠岩与硅藻土复合预涂助滤剂对过滤周期的影响 |
| 2.5 珍珠岩与硅藻土复合预涂助滤剂对过滤精度的影响 |
| 2.6 活性炭不同添加量对脱色效果的影响 |
| 3 结论 |
（2）CBM结构域在GH16家族琼胶酶中的功能研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 缩略词表 |
| 第一章 引言 |
| 1.1 琼胶 |
| 1.2 琼胶酶的概述 |
| 1.2.1 琼胶酶的来源 |
| 1.2.2 琼胶酶分类 |
| 1.2.3 琼胶酶的活力测定 |
| 1.2.4 琼胶酶的分离纯化 |
| 1.2.5 琼胶酶的结构研究 |
| 1.2.6 琼胶酶的应用 |
| 1.2.6.1 琼胶酶寡糖的制备 |
| 1.2.6.2 制备单细胞或原生质体 |
| 1.2.6.3 目的基因的回收 |
| 1.2.6.4 生物能源化 |
| 1.2.7 琼胶酶基因的异源表达 |
| 1.2.7.1 琼胶酶基因在大肠杆菌表达系统中的异源表达 |
| 1.2.7.2 琼胶酶基因在毕赤酵母表达系统中的异源表达 |
| 1.2.8 琼胶寡糖 |
| 1.3 碳水化合物结合模块(CBM)简介 |
| 1.3.1 CBM简介 |
| 1.3.2 CBM的结构与功能 |
| 1.3.3 琼胶酶中的CBM |
| 1.4 本课题的选题依据与研究内容 |
| 1.4.1 选题依据 |
| 1.4.2 研究内容 |
| 第二章 GH16家族琼胶酶基因的序列分析及克隆 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 主要试剂 |
| 2.1.2 主要仪器设备 |
| 2.1.3 菌株和质粒 |
| 2.1.4 常用的培养基和溶液 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 琼胶酶活力的测定 |
| 2.2.1.1 D-半乳糖标准曲线的制作 |
| 2.2.1.2 琼胶酶活力的测定 |
| 2.2.2 产琼胶酶菌株基因组DNA的提取 |
| 2.2.3 琼胶酶全基因的克隆 |
| 2.2.4 琼胶酶全基因的测序与序列分析 |
| 2.2.4.1 制备大肠杆菌感受态细胞 |
| 2.2.4.2 测序克隆的获得 |
| 2.2.4.3 琼胶酶全基因的序列分析 |
| 2.2.5 含不同结构域(CBM)琼胶酶的克隆 |
| 2.2.5.1 引物的设计与合成 |
| 2.2.5.2 含不同结构域琼胶酶序列的扩增与回收 |
| 2.2.6 构建含不同结构域重组琼胶酶的表达载体 |
| 2.2.6.1 目的基因和载体的酶切 |
| 2.2.6.2 目的基因和载体的连接与转化 |
| 2.2.6.3 重组质粒的筛选 |
| 2.2.7 构建表达含不同结构域重组琼胶酶的大肠杆菌工程菌株 |
| 2.2.7.1 重组质粒的提取 |
| 2.2.7.2 重组菌株的筛选 |
| 2.2.8 重组酶的诱导表达 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 琼胶酶全基因的克隆与序列分析 |
| 2.3.2 含不同结构域CBM琼胶酶基因的克隆 |
| 2.3.3 含不同结构域CBM重组琼胶酶的构建 |
| 2.3.4 重组琼胶酶工程菌株的诱导表达及酶活测定 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 重组琼胶酶的分离及酶学性质研究 |
| 3.1 实验材料 |
| 3.1.1 主要药品 |
| 3.1.2 主要仪器 |
| 3.1.3 常用溶液及培养基 |
| 3.2 实验方法 |
| 3.2.1 重组酶的分离纯化 |
| 3.2.1.1 硫酸铵分级沉淀 |
| 3.2.1.2 镍柱纯化重组酶Aga-ms-R_1 |
| 3.2.1.3 DEAE-阴离子交换层析纯化Aga-ms-R,Aga-ms-R_2 |
| 3.2.1.4 SDS-PAGE电泳检测纯化产物 |
| 3.2.1.5 重组酶比活力的测定 |
| 3.2.2 重组酶的酶学性质 |
| 3.2.2.1 重组酶的最适反应pH及pH稳定性 |
| 3.2.2.2 重组酶的最适反应温度及热稳定性 |
| 3.2.2.3 金属离子和化学试剂对重组酶酶活的影响 |
| 3.2.3 酶的动力学参数测定 |
| 3.2.4 重组琼胶酶的底物特异性 |
| 3.2.5 酶解产物分析 |
| 3.2.5.1 薄层层析分析 |
| 3.2.5.2 高效液相色谱分析 |
| 3.2.5.3 质谱分析 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 重组琼胶酶的分离纯化 |
| 3.3.1.1 硫酸铵分级沉淀 |
| 3.3.1.2 镍柱纯化重组酶Aga-ms-R_1 |
| 3.3.1.3 DEAE-阴离子交换层析纯化Aga-ms-R,Aga-ms-R_2 |
| 3.3.2 重组琼胶酶酶学性质研究 |
| 3.3.2.1 最适反应pH和pH稳定性 |
| 3.3.2.2 最适反应温度和热稳定性 |
| 3.3.2.3 不同金属及化学试剂对重组琼胶酶活性的分析 |
| 3.3.3 重组酶的K_m和V_(max)值的测定 |
| 3.3.4 重组酶底物特异性研究 |
| 3.3.5 重组酶降解琼胶产物分析 |
| 3.3.5.1 薄层层析分析 |
| 3.3.5.2 高效液相色谱分析 |
| 3.3.5.3 质谱分析 |
| 3.4 小结 |
| 结论和展望 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
| 个人简历 |
（3）微波法提取龙须菜琼胶及其理化性质的研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 琼胶提取方法 |
| 1.3 产品指标测定 |
| 2 结果 |
| 2.1 微波功率对出胶率和凝胶强度的影响 |
| 2.2 微波功率对硫酸基含量和3, 6-内醚-L-半乳糖含量的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 微波功率对琼胶理化性质影响 |
| 3.2 微波时间对琼胶理化性质影响 |
（4）琼胶寡糖的酶解制备及其活性研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 主要符号表 |
| 第一章 引言 |
| 1.1 龙须菜的研究概况 |
| 1.1.1 龙须菜简介 |
| 1.1.2 龙须菜的成分及应用 |
| 1.2 琼胶的研究概况 |
| 1.2.1 琼胶简介 |
| 1.2.2 琼胶的性质及用途 |
| 1.2.3 琼胶的提取方法 |
| 1.3 琼胶酶 |
| 1.3.1 琼胶酶简介 |
| 1.3.2 琼胶酶活力测定方法 |
| 1.3.3 琼胶酶的分离纯化 |
| 1.3.4 琼胶酶的应用 |
| 1.3.4.1 制备原生质体和单细胞 |
| 1.3.4.2 核酸的回收 |
| 1.3.4.3 制备功能性琼胶寡糖 |
| 1.4 琼胶寡糖的研究概况 |
| 1.4.1 琼胶寡糖简介 |
| 1.4.2 琼胶寡糖的性质及生物活性 |
| 1.4.2.1 琼胶寡糖的抑菌活性 |
| 1.4.2.2 琼胶寡糖的益菌活性 |
| 1.4.2.3 琼胶寡糖的抗肿瘤、抗病毒、抗炎症活性 |
| 1.4.2.4 琼胶寡糖的抗氧化活性 |
| 1.4.2.5 琼胶寡糖的保湿功效 |
| 1.4.3 琼胶寡糖的制备方法 |
| 1.4.4 琼胶寡糖的分离纯化及测定 |
| 1.4.4.1 琼胶寡糖的分离纯化 |
| 1.4.4.2 琼胶寡糖的检测 |
| 1.4.5 琼胶寡糖的结构分析 |
| 1.5 本课题的选题依据与研究内容 |
| 1.5.1 选题依据 |
| 1.5.2 研究内容 |
| 1.5.2.1 重组琼胶酶的分离纯化及酶学性质研究 |
| 1.5.2.2 龙须菜中琼胶提取工艺优化 |
| 1.5.2.3 琼胶寡糖的制备工艺优化 |
| 1.5.2.4 琼胶寡糖的分离纯化及鉴定 |
| 1.5.2.5 琼胶寡糖的生物活性研究 |
| 第二章 重组琼胶酶酶学性质研究 |
| 2.1 材料与设备 |
| 2.1.1 材料与试剂 |
| 2.1.1.1 试剂配制 |
| 2.1.2 仪器与设备 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 重组琼胶酶的分离纯化 |
| 2.2.1.1 重组琼胶酶酶液的浓缩 |
| 2.2.1.2 重组琼胶酶酶液SDS-PAGE凝胶电泳 |
| 2.2.2 重组酶的酶学性质研究 |
| 2.2.2.1 D-半乳糖标准曲线制作 |
| 2.2.2.2 重组琼胶酶活力测定 |
| 2.2.2.3 重组琼胶酶的最适反应pH和pH稳定性 |
| 2.2.2.4 重组琼胶酶的最适反应温度和热稳定性 |
| 2.2.2.5 重组琼胶酶的比活力测定 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 重组琼胶酶的分离纯化 |
| 2.3.2 重组琼胶酶的酶学性质研究 |
| 2.3.2.1 重组琼胶酶的最适反应pH和pH稳定性 |
| 2.3.2.2 重组琼胶酶的最适反应温度和热稳定性 |
| 2.3.2.3 重组琼胶酶的比活力 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 龙须菜中琼胶的提取及其工艺优化 |
| 3.1 材料与设备 |
| 3.1.1 材料与试剂 |
| 3.1.2 仪器与设备 |
| 3.2 实验方法 |
| 3.2.1 总糖含量测定 |
| 3.2.2 蛋白含量测定 |
| 3.2.3 龙须菜中琼胶的提取 |
| 3.2.4 琼胶得率的测定 |
| 3.2.5 单因素实验 |
| 3.2.5.1 水提温度对琼胶得率的影响 |
| 3.2.5.2 提取时间对琼胶得率的影响 |
| 3.2.5.3 液料比对琼胶得率的影响 |
| 3.2.6 正交试验 |
| 3.2.6.1 正交试验设计 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 单因素实验 |
| 3.3.1.1 水提温度的确定 |
| 3.3.1.2 提取时间的确定 |
| 3.3.1.3 液料比的确定 |
| 3.3.2 正交试验 |
| 3.3.2.1 正交设计与结果 |
| 3.3.3 总糖含量和蛋白质含量测定 |
| 3.4 小结 |
| 第四章 琼胶寡糖的制备及其工艺优化 |
| 4.1 材料与设备 |
| 4.1.1 材料与试剂 |
| 4.1.2 仪器与设备 |
| 4.2 实验方法 |
| 4.2.1 琼胶寡糖的酸法制备 |
| 4.2.2 琼胶寡糖的酶法制备 |
| 4.2.3 琼胶寡糖含量测定 |
| 4.2.4 酸法制备琼胶寡糖单因素实验 |
| 4.2.4.1 酸种类 |
| 4.2.4.2 盐酸浓度对水解度的影响 |
| 4.2.4.3 酸解时间对水解度的影响 |
| 4.2.4.4 底物浓度对水解度的影响 |
| 4.2.5 酸法制备琼胶寡糖响应面实验 |
| 4.2.5.1 响应面实验设计 |
| 4.2.5.2 统计分析 |
| 4.2.6 酶法制备琼胶寡糖单因素实验 |
| 4.2.6.1 pH对水解度的影响 |
| 4.2.6.2 温度对水解度的影响 |
| 4.2.6.3 时间对水解度的影响 |
| 4.2.6.4 底物浓度对水解度的影响 |
| 4.2.6.5 加酶量对水解度的影响 |
| 4.2.7 酶法制备琼胶寡糖响应面实验 |
| 4.2.7.1 响应面实验设计 |
| 4.2.7.2 统计分析 |
| 4.2.8 产物分析 |
| 4.2.8.1 薄层层析分析 |
| 4.2.8.2 高效液相色谱分析 |
| 4.2.8.3 质谱分析 |
| 4.2.8.4 核磁共振波谱分析 |
| 4.2.8.5 组成成分测定 |
| 4.2.8.6 最终酶解产物分析 |
| 4.3 结果与讨论 |
| 4.3.1 酸法制备琼胶寡糖单因素实验 |
| 4.3.1.1 酸种类的确定 |
| 4.3.1.2 盐酸浓度的确定 |
| 4.3.1.3 酸解时间的确定 |
| 4.3.1.4 底物浓度的确定 |
| 4.3.2 酸法制备琼胶寡糖响应面实验 |
| 4.3.2.1 响应曲面实验设计与结果 |
| 4.3.2.2 二阶模型的建立与分析 |
| 4.3.2.3 响应曲面分析与优化 |
| 4.3.3 酶法制备琼胶寡糖单因素实验 |
| 4.3.3.1 pH的确定 |
| 4.3.3.2 温度的确定 |
| 4.3.3.3 时间的确定 |
| 4.3.3.4 底物浓度的确定 |
| 4.3.3.5 加酶量的确定 |
| 4.3.4 酶法制备琼胶寡糖的响应面实验 |
| 4.3.4.1 响应曲面实验设计与结果 |
| 4.3.4.2 二阶模型的建立与分析 |
| 4.3.4.3 响应曲面分析与优化 |
| 4.3.5 产物分析 |
| 4.3.5.1 薄层层析分析 |
| 4.3.5.2 高效液相色谱分析 |
| 4.3.5.3 质谱分析 |
| 4.3.5.4 核磁共振波谱分析 |
| 4.3.5.5 组分测定 |
| 4.3.5.6 最终降解产物分析 |
| 4.4 小结 |
| 第五章 琼胶寡糖的分离纯化及鉴定 |
| 5.1 材料与设备 |
| 5.1.1 材料与试剂 |
| 5.1.2 仪器与设备 |
| 5.2 实验方法 |
| 5.2.1 琼胶寡糖的分离纯化 |
| 5.2.2 产物分析 |
| 5.2.2.1 薄层层析分析 |
| 5.2.2.2 高效液相色谱分析 |
| 5.2.2.3 质谱分析 |
| 5.2.2.4 核磁共振波谱分析 |
| 5.3 结果与讨论 |
| 5.3.1 酶解产物的分离纯化 |
| 5.3.2 产物分析 |
| 5.3.2.1 薄层层析分析 |
| 5.3.2.2 高效液相色谱分析 |
| 5.3.2.3 质谱分析 |
| 5.3.2.4 核磁共振波谱分析 |
| 5.4 小结 |
| 第六章 琼胶寡糖的活性研究 |
| 6.1 材料与设备 |
| 6.1.1 实验材料与试剂 |
| 6.1.2 试剂及培养基配制 |
| 6.1.3 仪器与设备 |
| 6.2 实验方法 |
| 6.2.1 抗氧化活性 |
| 6.2.1.1 羟自由基清除能力 |
| 6.2.1.2 ABTS自由基清除能力 |
| 6.2.1.3 DPPH自由基清除能力 |
| 6.2.1.4 还原力 |
| 6.2.2 抑制酪氨酸酶活性 |
| 6.2.2.1 琼胶寡糖对酪氨酸酶双酚酶活力的影响 |
| 6.2.2.2 新琼四糖对酪氨酸酶双酚酶的抑制机理 |
| 6.2.2.3 新琼四糖对酪氨酸酶双酚酶的抑制类型 |
| 6.2.3 抑制ACE活性 |
| 6.2.4 益菌活性 |
| 6.3 结果与讨论 |
| 6.3.1 抗氧化活性 |
| 6.3.1.1 羟自由基清除能力 |
| 6.3.1.2 ABTS自由基清除能力 |
| 6.3.1.3 DPPH自由基清除能力 |
| 6.3.1.4 还原力 |
| 6.3.2 抑制酪氨酸酶活性 |
| 6.3.2.1 琼胶寡糖对酪氨酸酶双酚酶活力的影响 |
| 6.3.2.2 新琼四糖对酪氨酸酶双酚酶的抑制机理 |
| 6.3.2.3 新琼四糖对酪氨酸酶双酚酶的抑制类型 |
| 6.3.3 抑制ACE活性 |
| 6.3.4 益菌活性 |
| 6.4 小结 |
| 结论与展望 |
| 1 结论 |
| 2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录 |
| 个人简历 |
| 在学期间的研究成果 |
（5）江蓠残渣琼胶提取的方法研究（论文提纲范文）
| 1 实验材料 |
| 1.1 原料 |
| 1.2 试剂 |
| 1.3 仪器设备 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 新鲜江蓠琼胶的提取 |
| 2.2 江蓠残渣琼胶的提取 |
| 3 实验结果 |
| 3.1 碱浓度、温度和处理时间对江蓠出胶率的影响 |
| 3.2 江蓠残渣的出胶率 |
| 4 讨论 |
（6）海水提取龙须菜琼胶的碱处理条件优化（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 龙须菜琼胶提取工艺 |
| 1.3 琼胶的硫酸基含量测定方法 |
| 1.4 琼胶凝胶强度的测定方法[10] |
| 1.5 琼胶出胶率的测定[7-10] |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 碱处理完全正交实验质量检测结果 |
| 2.2 不同处理条件下的出胶率极差分析 |
| 2.3 不同处理条件下的琼胶硫酸基含量极差分析 |
| 2.4 不同处理条件下的凝胶强度极差分析 |
| 3 讨 论 |
（8）国内江蓠提取琼胶加工工艺的研究进展（论文提纲范文）
| 1 江蓠提取琼胶的加工工艺 |
| 2 碱法提胶工艺 |
| 2.1 碱处理 |
| 2.2 漂白 |
| 2.3 提胶 |
| 3 加助剂的碱法提胶工艺 |
| 3.1 碱处理 |
| 3.2 漂白 |
| 3.3 提胶 |
| 4 酶法提胶工艺 |
| 5 微波超声波提胶工艺 |
| 6 其他工艺改进 |
| 6.1 降低氯气浓度技术 |
| 6.2 清洗、浸泡技术 |
| 6.3 海水替代淡水技术 |
| 7 小结 |
（9）海水替代淡水在江蓠加工中的应用研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 琼胶生产工艺 |
| 1.3 海水预处理 |
| 2 结果与讨论 |
| 2.1 淡水和海水的对比实验 |
| 2.2 海水条件下不同浓度HCl酸化液的影响 |
| 2.3 海水条件下不同浓度H2C2O4酸化液的影响 |
| 2.4 海水条件下新工艺的效果 |
| 3 结论 |
（10）沙菜卡拉胶漂白工艺研究（论文提纲范文）
| 1 实验部分 |
| 1.1 材料与试剂 |
| 1.2 工艺流程 |
| 1.3 产品指标测定 |
| 2 结果与讨论 |
| 2.1 酸化液浓度对产品的影响 |
| 2.2 Na Cl O对漂白和凝胶强度的影响 |
| 2.3 H2C2O4对漂白和产品的影响 |
| 3 结论 |
四、NaClO法漂白江蓠时不同工艺对氯气浓度及漂白效果的影响（论文参考文献）
- [1]海藻江蓠琼胶的绿色提取工艺[J]. 蔡鹰,李思东,吴湛霞,黄娜,张国光,胡章. 广东海洋大学学报, 2021(05)
- [2]CBM结构域在GH16家族琼胶酶中的功能研究[D]. 陈志琳. 福州大学, 2018(03)
- [3]微波法提取龙须菜琼胶及其理化性质的研究[J]. 王连杰,沈照鹏,穆惠敏,崔欣,江晓路. 水产学报, 2017(06)
- [4]琼胶寡糖的酶解制备及其活性研究[D]. 谢金盛. 福州大学, 2016(07)
- [5]江蓠残渣琼胶提取的方法研究[J]. 王平,张俊杰,谢捷. 中华中医药学刊, 2013(12)
- [6]海水提取龙须菜琼胶的碱处理条件优化[J]. 柯德森,刘春媚,周子琳,巫锦雄. 广州大学学报(自然科学版), 2012(05)
- [7]龙须菜片的制备及其润肠通便作用研究[J]. 李光喜,黄洁玉,唐春萍,林汉森. 中药材, 2011(04)
- [8]国内江蓠提取琼胶加工工艺的研究进展[J]. 吴湛霞,董静静,李思东,张琳. 广西轻工业, 2010(09)
- [9]海水替代淡水在江蓠加工中的应用研究[J]. 蔡鹰,李思东,黄家康,陈碧. 广东化工, 2009(11)
- [10]沙菜卡拉胶漂白工艺研究[J]. 黄家康,蔡鹰,李思东,杨磊. 广东化工, 2009(04)